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外泌體的提取分離：1、超速離心法（差速離心）。超離法是常用的外泌體純化手段，采用低速離心、高速離心交替進(jìn)行（如圖所示），可分離到大小相近的囊泡顆粒。超離法因操作簡單，獲得的囊泡數(shù)量較多而廣受歡迎，但過程比較費時，且回收率不穩(wěn)定（可能與轉(zhuǎn)子類型有關(guān)），純度也受到質(zhì)疑；此外，重復(fù)離心操作還有可能對囊泡造成損害，從而降低其質(zhì)量。2、密度梯度離心。在超速離心力作用下，使蔗糖溶液形成從低到高連續(xù)分布的密度階層，是一種區(qū)帶分離法。通過密度梯度離心，樣品中的外泌體將在1.13-1.19g/ml的密度范圍富集。此法獲得的外泌體純度較高，但步驟繁瑣，耗時。這些試劑盒不需要特殊設(shè)備，隨著產(chǎn)品不斷更新?lián)Q代，提取效率和純化效果逐漸提高。長沙外泌體提取試劑服務(wù)電話

大量關(guān)于一些病癥相關(guān)巨噬細(xì)胞的研究表明，一些病癥相關(guān)巨噬細(xì)胞通過與一些病癥細(xì)胞進(jìn)行細(xì)胞間通訊，與一些病癥進(jìn)展和轉(zhuǎn)移相關(guān)，然而對TAM與一些病癥細(xì)胞之間通信的研究限制于可溶性因子，例如促炎細(xì)胞因子，其中包括趨化因子、炎癥因子和生長因子等。較近的研究證據(jù)表明，外泌體是一些病癥微環(huán)境中不同細(xì)胞類型之間的重要通訊媒介。外泌體將信息從一個細(xì)胞傳遞到另一個細(xì)胞并重編程受體細(xì)胞。目前大部分研究都集中在一些病癥細(xì)胞分泌的外泌體，關(guān)于TAM衍生的外泌體及其對治病細(xì)胞的影響知之甚少。TAM具有兩種相反的表型：M1亞型巨噬細(xì)胞具有抗一些病癥作用，M2型巨噬細(xì)胞具有致瘤作用活性。TAM的表型由特定的一些病癥來源的趨化因子和外泌體調(diào)節(jié)。較近的一項研究表明，一些病癥來源的外泌體miRNA調(diào)節(jié)一些病癥促進(jìn)M2巨噬細(xì)胞的極化。然而，TAM衍生的外泌體對一些病癥進(jìn)展和轉(zhuǎn)移的調(diào)節(jié)尚未明確定義。目前，TAM的外泌體概況仍然大部分未知，并且TAM衍生的外泌體對于一些病癥進(jìn)展在功能上是否必需還未確定。天津外泌體提取試劑廠家批發(fā)價外泌體提?。撼瑸V膜也可用于分離外泌體。

外泌體提?。撼叽缗抛枭V。尺寸排阻色譜（Size-exclusionchromatography，SEC）是基于大小而非分子量實現(xiàn)分離大分子。該技術(shù)應(yīng)用填充多孔聚合物微球的柱子，分子根據(jù)其直徑通過微球，半徑小的分子需要更長的時間才能通過色譜柱的孔隙遷移，而大分子則從色譜柱中更早地洗脫。尺寸排阻色譜可以精確分離大小分子。此外，可以將不同的洗脫溶液應(yīng)用于該方法。與離心方法相比，色譜分離已被證明具有更多優(yōu)勢，因為通過色譜分離的外泌體不受剪切力的影響，這可能會改變囊泡的結(jié)構(gòu)。目前，SEC是一種普遍接受的分離血液和尿液中外泌體的技術(shù)。不過，該方法耗時較長，不適合大量樣本處理

目前的主流觀點認(rèn)為，外泌體的產(chǎn)生過程為：細(xì)胞膜內(nèi)陷，形成內(nèi)體（endosome），再形成多泡體（multivesicularbodies，MVB），較后分泌到胞外成為外泌體。外泌體中攜帶有母細(xì)胞的多種蛋白質(zhì)、脂類、DNA和RNA等重要信息。外泌體較早見于1981年，EGTrams等在體外培養(yǎng)的綿羊紅細(xì)胞上清液中發(fā)現(xiàn)了有膜結(jié)構(gòu)的小囊泡，并命名為exosome。對于外泌體的作用，當(dāng)時推測為細(xì)胞排泄廢物的一種方式。1996年GRaposo等發(fā)現(xiàn)類似于B淋巴細(xì)胞的免疫細(xì)胞也會分泌抗原呈遞外泌體（antigenpresentingvesicle），所分泌的外泌體可以直接刺激效應(yīng)CD4+細(xì)胞的抗一些病癥反應(yīng)。2007年HValadi等進(jìn)一步發(fā)現(xiàn)細(xì)胞之間可以通過外泌體中RNA交換遺傳物質(zhì)。隨著有關(guān)外泌體研究越來越多，研究者發(fā)現(xiàn)它普遍參與了機體免疫應(yīng)答、抗原呈遞、細(xì)胞分化、一些病癥生長于侵襲等各種生物過程中。目前人們多采用超速離心、免疫磁珠、超濾、沉淀或試劑盒等方法實現(xiàn)外泌體的提取分離。靜置10～15分鐘，留取沉淀物備用。

外泌體的形成與鑒定：首先，細(xì)胞膜內(nèi)陷形成一個杯狀結(jié)構(gòu)，包括細(xì)胞表面蛋白和與細(xì)胞外環(huán)境相關(guān)的可溶性蛋白，導(dǎo)致早期胞內(nèi)體(early-sortingendosome，ESE)的從頭形成，或者是杯狀結(jié)構(gòu)直接和已經(jīng)存在的ESEs融合；trans-高爾基體和內(nèi)質(zhì)網(wǎng)也能協(xié)助形成ESEs。ESE成熟后形成晚期胞內(nèi)體(late-sortingendosomes，LSEs)，較終形成MVBs(也稱為多囊內(nèi)小體)。MVBs是通過endosome限制膜向內(nèi)凹(即質(zhì)膜雙凹)形成的，這一過程導(dǎo)致MVBs含有多個ILVs。MVB可以與溶酶體或自噬體融合，較終降解或與質(zhì)膜融合釋放作為外泌體的ILVs。外泌體表面蛋白包括四聚體蛋白、整合蛋白、免疫調(diào)節(jié)蛋白等。外泌體可以包含不同類型的細(xì)胞表面蛋白、細(xì)胞內(nèi)蛋白、RNA、DNA、氨基酸和代謝物。使用可截留100KD分子量的膜，通過離心截留上清中的外泌體，截留完成后。同時對超速離心機的設(shè)備要求以及操作程序的培訓(xùn)較大提高了提取成本。濟南外泌體提取試劑推薦廠家

超離法是常用的外泌體純化手段，采用低速離心、高速離心交替進(jìn)行，可分離到大小相近的囊泡顆粒。長沙外泌體提取試劑服務(wù)電話

外泌體的提取、分離方法：梯度密度離心法。研究發(fā)現(xiàn)，外泌體的密度在1.1~1.19kg·L-1之間，因此，可以采用密度梯度離心法來分離外泌體。該方法是將超速離心結(jié)合蔗糖密度梯度或蔗糖墊結(jié)合，原理是先除去非囊泡物質(zhì)，再通過梯度密度濃縮提取外泌體，該方法可以得到相對較為純凈的外泌體。傳統(tǒng)的梯度密度方法通常需要離心16h，但是2012年，研究者[15]使用了62~90h才分離出某些確切囊泡，因此，該方法可能不足以沉淀所有的外泌體。如果離心時間不充足，污染物質(zhì)可能和外泌體保持在相同的密度層，特別是這個密度范圍又比較寬。長沙外泌體提取試劑服務(wù)電話